Leptospira spp. of the Urinary Tract of Female Carrier Goats in Semi-Arid Conditions

Autores

DOI:

https://doi.org/10.22456/1679-9216.124079

Resumo

Background: Leptospirosis is an important infectious disease in goat farming, with a worldwide distribution. It is usually transmitted by rodents and the genital route, may cause reproductive losses, negatively impacting goat farming. The diagnosis lies on serological, molecular and isolation techniques. Considering the importance of this disease for small ruminants, this work aimed to evaluate the serological, molecular findings and isolation of pathogenic leptospires in the urinary tract (kidney and bladder tissues) of goats.

Materials, Methods & Results:  Thirty-four adult goats were used for slaughter. Renal samples (n = 34), bladder (n = 34), were collected for isolation of the agent and molecular detection of Leptospira sp. and blood samples (n = 34) for serological testing. The polymerase chain reaction (PCR) was used as a molecular test and the microscopic serum agglutination test (MAT) was used as a serological test. Samples with DNA amplification were subjected to genetic sequencing. The presence of Leptospira DNA was found in the tissues of 8 (23.4%) goats, and of these, only 2 were positive in PCR and MAT. There was a slight agreement between the PCR and MAT techniques (k = 0.150; P = 0.436). In 6 (17.6%) samples of renal tissue and 2 (5.8%) bladder samples, Leptospira DNA was detected. The genes in a kidney tissue sample were sequenced and demonstrated 99% similarity to Leptospira interrogans. Anti-Leptospira sp. were detected in 6 (17.6%) of the animals tested.

Discussion: Serology identified 3 predominant serogroups: Icterohaemorrhagiae, Tarassovi and Autumnalis, serogroups that are related to the presence of rodents that coexist in rural environments. Autumnalis has been reported in small ruminants, raising the hypothesis that goats are adapted, becoming chronic carriers and possible maintenance hosts. The frequency obtained (17.6%) may be the result of the mixed breed pattern and rustic characteristics inherent to the goat species. Given the characteristics of the semi-arid region, such as low rainfall and high solar incidence, it is essential to use an adapted methodology, with a lower cut-off point (1:50), as the serological titer is an established relationship between the animal species, the level of exposure throughout its evolution and the region studied. Molecular findings and bacterial isolation reveal the agent's ability to colonize the urinary tract of goats. These data show the importance that urine has in the epidemiological chain, being able to transmit the agent through direct contact with this product or through contamination of soil and water. There was no statistical agreement between the diagnostic techniques used in this study, in this case, an association between PCR and MAT is recommended to obtain data with high sensitivity and specificity. A bladder sample was sequenced and showed 99% similarity to Leptospira interrogans. In the semiarid region, the most common form of leptospirosis spread is through the sale of animals in business fairs for breeding, rearing or slaughter, as well as sharing the same property with several breeders. The introduction of chronic and asymptomatic carriers on the properties represents a serious risk for the spread of the disease. The results show the presence of Leptospira spp. in semi-arid goat herds, having as risk factors the presence of rodents and intercropping. The association of MAT and PCR is necessary for a better diagnosis of the disease.

Keywords: leptospirosis, leptospires, zoonosis, serology, molecular detection, epidemiology, semiarid.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Português Português, Português

Mestranda pelo Programa de Pós Graduação em Ciência Animal da Universidade Federal de Campina Grande- UFCG, campus Patos (2018) na área de Doenças Infectocontagiosas/Epidemiologia Veterinária. Possui graduação em Medicina Veterinária pela UFCG/CSTR/UAMV (2013-2018). Integrante efetiva da comissão organizadora do Grupo de Estudo em Buiatria- GEBU/UFCG, realizando atividades extensionistas e científicas e encontros quinzenais para debates estudantis sobre assuntos da área. Realizou estágios no setor de Clínica Médica e Cirúrgica de Grandes e Clínica Médica e Cirúrgica de Pequenos Animais.

Português Português, Português

Graduado em Medicina Veterinária pela UFCG/CSTR (2017). Fez parte do Laboratório de Doenças Transmissíveis da UFCG. Tem experiência em clínica e epidemiologia de ruminantes.

Português Português, Português

Possui graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Estadual do Maranhão (2012), mestrado em Ciência Animal pela Universidade Estadual do Maranhão (2015) e cursando doutorado pela Universidade Federal de Campina Grande. Tem experiência na área de Medicina Veterinária, com ênfase em Preventiva, atuando principalmente nos seguintes temas: bacteriologia aplicada, baixada maranhense, ruminantes domésticos, maranhão, semiárido e Leptospira sp. Membro do Grupo de Pesquisa em Doenças Transmissíveis da UFCG, que atua na linha de pesquisa: Epidemiologia e Controle da Leptospirose na Região Semi-Árida do Nordeste brasileiro

Português Português, Português

Possui graduação em Medicina Veterinária pela Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias de Jaboticabal - UNESP (1992), mestrado em Ciências Biológicas (Microbiologia) pela Universidade de São Paulo (1994), doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia) pela Universidade de São Paulo (1998) e Livre Docente em Microbiologia pala Universidade Estadual Paulista (2006) . Atualmente é professor adjunto do Depto de Microbiologia e Imunologia, Instituto de Biociencias, Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho. Também é responsável pelo laboratório de virologia e diagnóstico molecular. Tem experiência na área de Virologia Animal, com ênfase em técnicas de diagnóstico de Doenças Infecciosas de Animais

Português Português, Português

Graduada em Ciências Biológicas - Bacharelado e Licenciatura - pela Universidade de São Paulo. Realizou Iniciação Científica no Departamento de Parasitologia do Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo. Mestre em Ciências com ênfase na Biologia da Relação Patógeno-Hospedeiro pelo Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo. Doutorado em Biotecnologia pelo Instituto de Biociências de Botucatu da Universidade Estadual Paulista "Júlio de Mesquita Filho". Trabalha atualmente para a FUNDIBIO (Fundação do Instituto de Biociências) como técnica de nível superior no Laboratório de Diagnóstico Molecular, sediado no IBTec, Unesp - Botucatu. É gerente do Laboratório de Diagnóstico Molecular Veterinário - LDMVET. Tem experiência em parasitologia, virologia e microbiologia com ênfase em Biologia Molecular e Diagnóstico

Português Português, Português

Possui graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Federal do Paraná (2006) e residência na Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho na Área de Zoonoses e Saúde Pública período de março 2007- fevereiro 2009. Mestrado na área de Saúde Animal, Saúde Pública Veterinária e Segurança Alimentar no Departamento de Higiene Veterinária e Saúde Pública, FMVZ - UNESP - Botucatu/SP (2011) (Bolsista FAPESP), doutorado-sanduíche na University of California - Davis, entre julho de 2012 e julho de 2013, sob orientação do Dr. Nicola Pusterla (Bolsista CAPES). Possui doutorado na área de Saúde Animal, Saúde Pública Veterinária e Segurança Alimentar (Bolsista FAPESP), no Departamento de Microbiologia e Imunologia, Instituto de Biocências (2014). Foi Professora Colaboradora do Curso de Medicina Veterinária, na Universidade do Centro-Oeste (Unicentro), Campus Guarapuava-PR (2015). Pós-Doutorado em Medicina Veterinária Preventiva (Bolsista FAPESP) no Instituto de Biotecnologia, UNESP-Botucatu/SP (2015-2018) e Pós-Doutorado em Medicina Veterinária, FMVZ, UNESP, Botucatu-SP (2018-2020). Assessora Técnica em Projetos no Laboratório de Diagnóstico de COVID-19, Instituto de Biotecnologia (IBTEC), UNESP, Botucatu-SP. Atualmente atua como bolsista de Desenvolvimento Tecnológico Industrial Nível A (DTI-A) em projeto de vigilância genômica de SARS-CoV-2 pela Rede Corona-Ômica FINEP-MCTI

Português Português, Português

Pós-Doc no Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal UFCG/CSTR (2017-2021), linha diagnóstico de doenças infecciosas bacterinas. Pós-Doc em Desenvolvimento Cientifico Regional-C/FAPEAM/FMT/HVD na linha de zoonoses virais - arboviroses, 2014-2017. Pós-Doc na linha de zoonoses virais (INCT-DENGUE) 2013-2014. Doutora em Medicina Veterinária Universidade Federal de Campina Grande/Centro de Saúde e Tecnologia Rural,(UFCG/CSTR), 2012. Mestre em Medicina Veterinária UFCG/CSTR 2010. Graduada em Medicina Veterinária UFCG/CSTR, 2007. Tem experiência na área de Medicina Veterinária Preventiva, zoonoses e doenças infecciosas e parasitária.

Português Português, Português

Possui Graduação (2007), Mestrado (2010), Doutorado (2012) e Pós-Doutorado (2015) em Medicina Veterinária pela Universidade Federal de Campina Grande (UFCG). Atualmente é Professor Adjunto (Classe C, Nível II) no Centro de Saúde e Tecnologia Rural da Universidade Federal de Campina Grande, Membro permanente do programa de Pós-Graduação em Saúde e Ciência Animal (PPGSCA) e colaborador no Programa de Pós-graduação em Ciência Animal (PPGCA) da Universidade Federal de Campina Grande na área de sanidade Animal. Tem experiência na área de Medicina Veterinária Preventiva com ênfase em Doenças Infectocontagiosas de Animais, atuando principalmente na epidemiologia da Leptospirose animal. Membro do grupo de pesquisa em doenças transmissíveis da Universidade Federal de Campina Grande atuando na linha de pesquisa: Epidemiologia e controle da Leptospirose na região semiárida do Nordeste brasileiro.

Português Português, Português

Possui Graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Federal da Paraíba, PB, em 2000, Mestrado em Epidemiologia Experimental Aplicada às Zoonoses pela Universidade de São Paulo, SP, em 2002 e Doutorado em Epidemiologia Experimental Aplicada às Zoonoses pela Universidade de São Paulo, SP, em 2006. É bolsista de Produtividade em Pesquisa do CNPq, nível 1A, e é professor Associado (nível 4) da Unidade Acadêmica de Medicina Veterinária (UAMV) do Centro de Saúde e Tecnologia Rural (CSTR) da Universidade Federal de Campina Grande (UFCG). Coordenador da área de Medicina Veterinária Preventiva da UAMV/CSTR/UFCG no período 2018/2019. Atualmente é Coordenador Administrativo da UAMV/CSTR/UFCG. Membro da Junta Directiva de la Sociedad Iberoamericana de Epidemiología Veterinaria y Medicina Preventiva (SIEVMP). Coordenador do Curso de Pós-Graduação em Medicina Veterinária da UFCG, no quadriênio 2013-2016. Atua como consultor de vários periódicos nacionais e internacionais nas áreas de Epidemiologia Animal e Doenças Infecciosas e Parasitárias. Atua como consultor ad hoc no CNPq, CAPES, FAPEAM, FACEPE, ANII (Uruguai) e CSIC (Uruguai). Tem experiência na área de Medicina Veterinária, com ênfase em Medicina Veterinária Preventiva, atuando principalmente nos seguintes temas: epidemiologia animal, epidemiologia das doenças infecciosas e parasitárias, Leptospirose animal, zoonoses, estudos epidemiológicos

Português Português, Português

Possui graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Federal da Paraíba (1985), mestrado em Epidemiologia Experimental Aplicada Às Zoonoses pela Universidade de São Paulo (1991) e doutorado em Epidemiologia Experimental Aplicada Às Zoonoses pela Universidade de São Paulo (1995). Atualmente é professor Titular da Universidade Federal de Campina Grande e Lidera o Grupo de Pesquisa Doenças Transmissíveis e integra grupo de pesquisa com pesquisadores da Universidade de São Paulo/Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia. Tem experiência na área de Medicina Veterinária, com ênfase em Epidemiologia Animal, atuando principalmente nos seguintes temas: leptospira, isolamento, ovinos, aglutininas e caprinos.

Referências

Adler B. & Moctezuma A.P. 2010. Leptospira and leptospirosis. Veterinary Microbiology. 140: 287-296. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.03.012. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.03.012

Adler B. 2015. History of leptospirosis and Leptospira. Current Topics in Microbiology and Immunology. 387: 79-84. DOI: 10.1007 / 978-3-662-45059-8-1.

Alves J.R.A., Lima G.M.S., Silva, J.D., Santos F.A., Higino S.S.S., Azevedo S.S. & Alves C.J. 2017. Epidemiological characterization and risk factors associated with leptospirosis and brucellosis in small ruminants sold at animal fair in the Sertão Region of Pernambuco State, a semiarid Region of Northeastern Brazil. Semina: Ciências Agrárias. 38(4): 1933-1946. DOI: 10.5433/1679-0359.2017v38n4p1933. DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2017v38n4p1933

Alves C.J., Andrade J.S.L., Vasconcellos S.A., Morais Z.M., Azevedo S.S. & Santos F.A. 2000. Avaliação dos níveis de aglutininas anti-Leptospira spp. em cães no município de Patos-PB, Brasil. Revista Brasileira de Ciência Veterinária. 7(2): 17-21. DOI: 10.4322/rbcv.2015.168. DOI: https://doi.org/10.4322/rbcv.2015.168

Alves C.J., Alcino J.F., Farias A.E.M., Higino S.S.S., Santos F.A., Azevedo S.S., Costa D.F. & Santos C.S.A.B. 2012. Caracterização epidemiológica e fatores de risco associados à leptospirose em ovinos deslanados do semiárido brasileiro. Pesquisa Veterinária Brasileira. 32(6): 523- 528. DOI: 10.1590/S0100-736X2012000600009. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-736X2012000600009

Araújo Neto J.O., Alves C.J., Azevedo S.S., Silva M.L.C.R. & Batista C.S.A. 2010. Soroprevalência da leptospirose em caprinos da microrregião do Seridó Oriental, Estado do Rio Grande do Norte, Brasil, e pesquisa de fatores de risco. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science. 47(2): 150-155. DOI: 10.1590/ S1413-95962010000200007. DOI: https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2010.26839

Ayres M., Ayres J.R.M., Ayres D.L. & Santos A.D. 2007. Duas amostras independentes. In: Ayres M. & Ayres J.R.M. (Eds). Bioestat 5.0: Aplicações Estatísticas nas Ciências Biomédicas. 5.ed. Tefé: Instituto Mamirauá, pp.125-145.

Chakraborty A., Miyahara S., Villanueva S.Y.A.M., Saito M., Gloriani N.G. & Yoshida S. 2011. Novel combination of selective agents for isolation of Leptospira species. Microbiology and Immunology. 55(7): 494-501. Doi: 10.1111/j.1348-0421.2011.00347.x. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.2011.00347.x

Costa D.F., Silva A.F., Farias A.E.M., Brasil A.W.L., Santos F.A., Guilherme R.F., Azevedo S.S. & Alves C.J. 2016. Serological study of the Leptospira spp. infection in sheep and goats slaughtered in the State of Paraíba, semiarid of Northeastern Brazil. Semina: Ciências Agrárias. 37(2): 819- 828. DOI: 10.5433/1679-0359.2016v37n2p819. DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2016v37n2p819

Costa D.F., Silva A.F., Brasil A.W.L., Loureiro A.P.P., Santos F.A., Azevedo S.S., Lilenbaum W. & Alves C.J. 2017. Leptospirosis in native mixed-breed sheep slaughtered a semiarid region of Brazil. Ciência Rural. 47: 1-6. Doi: 10.1590/0103-8478cr20160563. DOI: https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20160563

Director A., Penna B., Hamond C., Loureiro A.P., Martins G., Medeiros M.A. & Lilenbaum W. 2014. Isolation of Leptospira interrogans Hardjoprajitno from vaginal fluid of a clinically healthy ewe suggests potential for venereal transmission. Journal of Medical Microbiology. 63(9): 1234-1236. DOI: 10.1099/jmm.0.065466-0. DOI: https://doi.org/10.1099/jmm.0.065466-0

Gamage C.D., Koizumi N., Muto M., Nwafor-Okoli C., Kurukurusuriya S., Rajapakse J.R.P.V., Kularatne S.A.M., Kanda K., Lee R.B., Obayashi Y., Watanabe H. & Tamashiro H. 2011. Prevalence and carrier status of leptospirosis in smallholder dairy cattle and peridomestic rodents in Kandy, Sri Lanka. Vector-Borne Zoonotic Disease. 11: 1041-1047. DOI: 10.1089/vbz.2010.0153. DOI: https://doi.org/10.1089/vbz.2010.0153

Gouy M., Guindon S. & Gascuel O. 2010. SeaView version 4: a multiplatform graphical user interface for sequence alignment and phylogenetic tree building, Molecular Biology and Evolution. 27(2): 221-224. DOI: 10.1093/molbev/msp259. DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msp259

Hamond C., Martins G., Loureiro A.P., Pestana C., Lawson-Ferreira R., Medeiros M.A. & Lilenbaum W. 2014. Urinary PCR as an increasingly useful tool for an accurate diagnosis of leptospirosis in livestock. Veterinary Research Communications. 38(1): 81-85. DOI: 10.1007/s11259-013-9582-x. DOI: https://doi.org/10.1007/s11259-013-9582-x

Hamond C., Pestana C.O., Souza C.M.R., Cunha L.E.R., Brandão F.Z., Medeiros M.A. & Lilenbaum W. 2015. Presence of leptospires on genital tract of mares with reproductive problems. Veterinary Microbioly. 179: 264-269. DOI: 10.1016/j.vetmic.2015.06.014. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.06.014

Higino S.S.S., Azevedo S.S., Alves C.J., Figueiredo S.M., Silva M.L.C.R. & Batista C.S.A. 2010. Frequência de leptospirose em ovinos abatidos no Município de Patos, Paraíba. Arquivos do Instituto Biológico. 77(3): 525-527. DOI: 10.1590/1808-1657v77p5252010. DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657v77p5252010

Juc R.U., Colombari E. & Sato M.A. 2011. Importância do sistema nervoso no controle da micção e armazenamento urinário. Arquivos Brasileiros de Ciências da Saúde. 36(1): 55-60. DOI: 10.7322/abcs.v36i1.76. DOI: https://doi.org/10.7322/abcs.v36i1.76

Lilenbaum, W., Souza G.N., Ristow P., Moreira M.C., Fráguas S., Cardoso V.S. & Oelemann W.M.R. 2007. A serological study on Brucella abortus, caprine-arthritis-encephalitis virus and Leptospira in dairy goats in Rio de Janeiro, Brazil. The Veterinary Journal. 173: 408-412. DOI: 10.1016/j.tvjl.2005.12.003. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2005.12.003

Lilenbaum W., Varges R., Medeiros L., Cordeiro A.G., Cavalcanti A., Souza G.N., Richtzenhain L. & Vasconcellos S.A. 2008. Risk factors associated with leptospirosis in dairy goats under tropical conditions in Brazil. Research in Veterinary Science. 84: 14-21. DOI: 10.1016/j.rvsc.2007.03.011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2007.03.011

Lilenbaum W., Varges R., Ristow P., Cortez A., Souza S.O., Richtzenhain L.J. & Vasconcellos S.A. 2009. Identification of Leptospira spp. carriers among seroreactive goats and sheep by polymerase chain reaction. Research in Veterinary Science. 87: 16-19. DOI: 10.1016/j.rvsc.2007.03.011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2008.12.014

Martins G. & Lilenbaum W. 2014. Leptospirosis in sheep and goats under tropical conditions. Tropical Animal Health and Production. 46(1): 11-17. DOI: 10.1007/s11250-013-0480-6. DOI: https://doi.org/10.1007/s11250-013-0480-6

Nogueira D.B., Costa, F.T.R., Bezerra C.S., Silva M.L.C.R., Costa, D.F., Viana, M.P., Silva, J.D., Araújo Júnior J.P., Malossi C.D., Ullmann L.S., Santos C.S.A.B., Alves C.J. & Azevedo S.S. 2020. Use of serological and molecular techniques for detection of Leptospira sp. carrier sheep under semiarid conditions and the importance of genital transmission route. Acta Tropica. 207: 1-8. DOI: 10.1016/j.actatropica.2020.105497. DOI: https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2020.105497

OIE - World Organization for Animal Health. 2014. Leptospirosis: Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. World Organization for Animal Health, Paris, France. 598p.

Petrakovsky J., Carpinetti B. & Antonuci A. 2015. Prevalencia Serológica de Leptospira spp. en Cerdos Silvestres (Sus scrofa) en Bahía de Samborombón, provincia de Buenos Aires, República Argentina, en el Periodo 2013-2015. Salud y Tecnología Veterinaria. 3(1): 23-27. DOI: 10.20453/stv.v3i1.2759. DOI: https://doi.org/10.20453/stv.v3i1.2759

Pimenta, C.L.R.M., Bezerra C.S., Morais D.A., Silva M.L.C.R., Nogueira D.B., Costa D.F., Santos C.S.A.B., Higino S.S.S., Alves C.J. & Azevedo S.S. 2019. Seroprevalence and predominant serogroups of Leptospira sp. in serological tests of ruminants in northeastern Brazil. Semina: Ciências Agrárias. 40: 1513-1522. DOI: 10.5433/1679-0359.2019v40n4p1513. DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2019v40n4p1513

Picardeau M. 2013. Diagnosis and epidemiology of leptospirosis. Médicine et Maladies Infectieuses. 43(1): 1-9. DOI: 10.1016/j.medmal.2012. DOI: https://doi.org/10.1016/j.medmal.2012.11.005

Platt A.R., Woodhall R.W. & George A.L. 2007. Improved DNA sequencing quality and efficiency using an optimized fast cycle sequencing protocol. BioTechniques. 43(1): 58-62. DOI: 10.2144/000112499. DOI: https://doi.org/10.2144/000112499

Ramos A.C.F., Souza G.N. & Lilenbaum W. 2006. Influence of leptospirosis on reproductive performance of sows in Brazil. Theriogenology. 66(4): 1021-1025. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.08.028. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.08.028

Santos J.P., Lima-Ribeiro A.M.C., Oliveira P.R., Santos M.P., Ferreira Jr. A., Medeiros A.A. & Tavares T.C.F. 2012. Seroprevalence and risk factors for Leptospirosis in goats in Uberlândia, Minas Gerais, Brazil. Tropical Animal Health and Production. 44: 101-106. DOI: 10.1007/s11250-011-9894-1. DOI: https://doi.org/10.1007/s11250-011-9894-1

Silva A.F., Farias P.J.A., Silva M.L.C.R., Araújo Jr. J.P., Malossi C.D., Ullmann L.S., Costa D.F., Higino S.S.S., Azevedo S.S. & Alves C.J. 2019. High frequency of genital carriers of Leptospira sp. in sheep slaughtered in the semi-arid region of northeastern Brazil. Tropical Animal Health and Production. 51(3): 43-47. DOI: 10.1007/s11250-018-1657-9. DOI: https://doi.org/10.1007/s11250-018-1657-9

Silva E.F., Brod C.S., Cerqueira G.M., Bourscheidt D., Seyffert N., Queiroz A., Santos C.S., Ko A.I. & Dellagostin O.A. 2007. Isolation of Leptospira Noguchii from sheep. Veterinary Microbiology. 121: 144-149. DOI: 10.1016/j.vetmic.2006.11.010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2006.11.010

Silva R.C., Costa V.M., Shimabukuro F.H., Richini-Pereira V.B., Menozzi B.D. & Langoni H. 2012. Frequency of Leptospira spp. in sheep from Brazilian slaughterhouses and its association with epidemiological variables. Pesquisa Veterinária Brasileira. 32(3): 194-198. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-736X2012000300002. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-736X2012000300002

Stoddard R.A., Gee J.E., Wilkins P.P., McCaustland K & Hoffmaster A.R. 2009. Detection of pathogenic Leptospira spp. through TaqMan polymerase chain reaction targeting the LipL32 gene. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 64(3): 247-255. DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2009.03.014. DOI: https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2009.03.014

Arquivos adicionais

Publicado

2022-06-02

Como Citar

Português, P., Português, P., Português, P., Português, P., Português, P., Português, P., … Português, P. (2022). Leptospira spp. of the Urinary Tract of Female Carrier Goats in Semi-Arid Conditions. Acta Scientiae Veterinariae, 50. https://doi.org/10.22456/1679-9216.124079

Edição

Seção

Articles