Evaluation of Solvent Toxicity of Plant Extract with Antiviral Action in Refrigerated Goat Semen

Authors

  • Renato Mesquita Peixoto Laboratório de Virologia (LABOVIR), PPGCV, UECE), Fortaleza.
  • Alice Andrioli EMBRAPA Caprinos e Ovinos (CNPCO), Sobral, CE.
  • Diones Oliveira Santos EMBRAPA Caprinos e Ovinos (CNPCO), Sobral, CE.
  • Raymundo Rizaldo Pinheiro EMBRAPA Caprinos e Ovinos (CNPCO), Sobral, CE.
  • Juscilânia Furtado Araújo Laboratório de Virologia (LABOVIR), PPGCV, UECE), Fortaleza.
  • Ana Lídia Madeira de Sousa Laboratório de Virologia (LABOVIR), PPGCV, UECE), Fortaleza.
  • Davi Faria Silva Instituto Superior de Teologia Aplicada (Faculdades INTA), Sobral.
  • Edgar Marques Damasceno Universidade Estadual Vale do Acaraú (UVA), Sobral.
  • Maria Fátima da Silva Texeira Laboratório de Virologia (LABOVIR), PPGCV, UECE), Fortaleza.

DOI:

https://doi.org/10.22456/1679-9216.80578

Keywords:

Dimethyl sulfoxide, MEM, Tris yolk, sperm preservation.

Abstract

Background: Caprine Arthritis Encephalitis Virus have been detected in sperm of breeding goats causing economic losses. In order to control the virus, researches aiming to identify natural extracts with potential antiviral effects are performed. However, aqueous or ethanolic extracts must be diluted in dimethyl sulfoxide (DMSO), which is a substance with unknown effects in sperm quality when present in diluting media. Therefore, this study aimed to evaluate sperm viability of refrigerated caprine semen diluted in media containing DMSO. This was performed to provide data that aid in researches involving the use of this component with natural extracts that may inactivate the caprine lentivirus in sperm.

Materials, Methods & Results: The experiment was performed at the Laboratory of Seminal Technology in Embrapa Goats and Sheep in the city of Sobral, Brazil. Sperm viability was assessed in caprine semen refrigerated in two dilution media with crescent concentrations of DMSO. Sperm samples of five goats seronegative for the caprine lentivirus were pooled and diluted in minimal essential medium (MEM) enriched with glucose at 0.01 M added of crescent concentrations of DMSO (0%, 1.5%, 1.75%, 2.0%, 2.25% and 2.5%). The same breeders provided the pool of sperm to test Tris added 2.5% of egg yolk and the same concentrations of DMSO previously mentioned. Treatments were refrigerated at 7°C and evaluated up until four h after DMSO addition. Individual progressive motility (MIP), sperm vigor (V), percentage of spermatozoa reactive to hypoosmotic test (HO) and morphologically normal (NOR) were evaluated. IPM, vigor and NOR remained within normal standards for the caprine species in all treatments test. Percentage results of spermatozoa reactive to hypoosmotic was higher in Tris yolk with values ranging between 34.66% to 46.33%. Sperm vigor was positively correlated (r = 0.85) with IPM in the MEM diluted pool of sperm. In Tris yolk, vigor and hypoosmotic test correlated moderately (r = 0.63, r = 0.54, respectively) with IPM. Tris yolk medium added DMSO presented the highest percentage of reactivity to hypoosmotic test in all treatments when compared to MEM added DMSO.

Discussion: The fact that DMSO is easily homogenized in water, ethylic alcohol and most organic solvents favors its use in diluting natural extracts. These components are a possible source of products that inactivate caprine arthritis encephalitis virus in sperm, which is the key to promoting the safe use of genetic material of infected breeders, in addition to commercial use of germplasm. In this study, there was no interference of DMSO in the analyzed parameters when added in a maximum concentration of 2.5% to MEM and Tris yolk, which is in accordance with standard values for goats. In addition, Tris yolk may promote greater protection to the membrane of sperm cells, which was demonstrated by hypoosmotic test. This medium could be ideal to be used in new methodologies that incorporate DMSO. In conclusion, DMSO added to dilution media Tris yolk and MEM did not interfere with the quality of refrigerated caprine sperm, which maintained viability. These results indicate that this substance did not present harmful effects to the genetic material, promoting the use as solvent of extracts from plant compounds with potential anti-viral effect. The information in this study may aid new research performed in this area.

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References

Alves G.E.C. 1998. Dimetilsulfóxido (DMSO). Saude Equina. 1(6): 6-10.

Aragão C.P.M., Maia S.P., Cavalcante J.M.M., Campello C.C., Salgueiro C.C.M. & Nunes J.F. 2013. Efeitos da criopreservação sobre a morfologia e morfometria de espermatozoides de caprinos diluídos em meio a base da água de coco em pó (ACP-101c). Ciência Animal. 23(2): 16-28.

Ayres M.C.C., Brandão M.S., Vieira-Junior G.M., Menor J.C.A.S., Silva H.B., Soares M.J.S. & Chaves M.H. 2008. Atividade antibacteriana de plantas úteis e constituintes químicos da raiz de Copernicia prunifera. Revista Brasileira de. Farmacognosia.18(1):90-97.

Bezerra F.Q.G. 2011. Avaliação de parâmetros fisiológicos e andrológicos de caprinos jovens da raça Boer. Revista de Medicina Veterinária. 1(1): 99-100.

Bispo C.A.S., Pugliesi G., Palhão M.P., Coelho P.G.B., Ker P.G., Rodrigues M.T. & Carvalho G.R. 2011. Características in vitro e fertilidade do sêmen caprino armazenado a 5°C e por 24 horas utilizando duas concentrações de gema de ovo no diluente. Ciência Animal Brasileira. 12: 653-660.

Bona E.A.M., Pinto F.G.S., Fruet T.K., Jorge T.C.M. & Moura A.C. 2014. Comparação de métodos para avaliação da atividade microbiana e determinação da concentração inibitória mínima (cim) de extratos vegetais aquosos e etanólicos. Arquivo do Instituto Biológico. 81(3): 218-225.

Castelo T.S., Frota T.R. & Silva A.R. 2008. Considerações sobre a criopreservação do sêmen de caprinos. Acta Veterinária Brasilica. 2: 67-75.

Celeghini E.C.C., Albuquerque R., Arruda R.P. & Lima C.G. 2000. Correlações entre as características seminais, parâmetros testiculares (peso e histologia) e peso corporal em galos. Revista Brasileira de Ciência Avícola. 1: 56.

Colégio Brasileiro de Reprodução Animal. 2013. Manual para exame andrológico e avaliação de sêmen animal. 2.ed. Belo Horizonte: CBRA. 91p.

Ferrari M.V., Weiss R.R., Folador A., Ribeiro F.L. & Collodel S.T.S. 1999. Características seminais de ovinos (Ovis aries) submetidos a tratamentos com dimetilsulfóxido (DMSO). Archives of Veterinary Science. 4(1): 117-120.

Huang S.Y., Kuo Y.H., Lee Y.P., Tsou H.L., Lin E.C. & Lee W.C. 2000. Association ofheat shock protein 70 with semen quality in boars. Animal Reproduction Science. 23: 231-240.

Manjunath P. & shivaprakash B.V. 2013. Pharmacology and clinical use of dimethyl sulfoxide (DMSO): A Review. International Journal of Molecular Veterinary. Research. 3: 23-33.

Melo M.I.V., Henry M. & Beker A.R.C.L. 2005. Teste hiposmótico para avaliação da viabilidade do sêmen equino resfriado com diferentes diluidores. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 57: 757-763.

Oliveira R.V., Nunes J.F., Salgueiro C.C.M., Cavalcante J.M.M, Moura A.A.A. & Araújo A.A. 2009. Avaliação morfológica de espermatozoides caprinos diluídos e congelados em meio à base de água de coco em pó (ACP-101) ou Tris, corados com eosina-negrosina e azul de bromofenol. Ciência Animal Brasileira. 10(3): 862-869.

Oliveira R.V., Nunes J.F., Salgueiro C.C.M., Cavalcante J.M.M., Brasil O.O. & Moura A.A.A.N. 2011. Avaliação de espermatozoides caprinos congelados em meio á base de água de coco em pó (ACP-101®) ou Tris. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 6: 1295-1302.

Oliveira I.R.S., Alves H.M., Castelo T.S., Bezerra F.S.B., Bezerra A.C.D.S. & Silva A.R. 2013. Correlações entre o teste hiposmótico e a avaliação clássica do sêmen de caprinos. Ciência Animal Brasileira. 14: 216-221.

Peterson K., Brinkhof J., Houwers D.J., Colenbrander B. & Gadella B.M. 2008. Presence of pro-lentiviral DNA in male sexual organs and ejaculates of small ruminants. Theriogenology. 69: 433-442.

Santos A.D.F., Torres C.A.A., Fonseca J.F., Borges A.M., Guimarães J.D., Costa E.P. & Rovay H. 2006. Uso de testes complementares para avaliação do congelamento do sêmen de bodes submetidos ao manejo de fotoperíodo artificial. Revista Brasileira de Zootecnia. 35(5): 1934-1942.

Silva A.K.B. 2010. Utilização do teste hiposmótico na avaliação do sêmen refrigerado de pequenos ruminantes. 44f. Dissertação (Mestrado em Medicina Veterinária) – Pós-graduação em Medicina Veterinária, Universidade Federal de Campina Grande.

Silveira T.S., Siqueira J.B., Guimarães S.E.F., Paula T.A.R., Miranda Neto T. & Guimarães J.D. 2010. Maturação sexual e parâmetros reprodutivos em touros da raça Nelore criados em sistema extensivo. Revista Brasileira de Zootecnia. 39(3): 503-511.

Silva M.R. & Souza B.B. 2016. Estresse térmico e sua influência na fisiologia hormonal de pequenos ruminantes. Journal of Animal Behaviour and Biometeorology. 4(2): 50-54.

Siqueira J.B., Guimarães J.D., Costa E.P., Henry M., Torres C.A.A., Silva M.V.G.B. & Silveira T.S. 2007. Relação da taxa de gestação com sêmen bovino congelado e testes de avaliação espermática in vitro. Revista Brasileira de Zootecnia. 36(2): 387-395.

Siqueira A.P., Silva Filho J.M., Fonseca J.F., Bruschi J.H., Palhares M.S., Borges A.M., Bruschi M.C.M., Peixoto M.P. & Rossi R. 2009. Taxa de concepção de cabras inseminadas com sêmen caprino resfriado a 5°C, por 12 ou 24 horas, em meio diluidor à base de gema de ovo. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 61: 66-71.

Souza K.C., Pinheiro R.R., Santos D.O. & Andrioli A. 2011. Viabilidade do meio essencial mínimo como diluidor de sêmen caprino em infecção experimental com vírus da artrite encefalite caprina (CAEV). In: Resumos da XII Reunión Latinoamericana de Reproducción Animal (Montevideo, Uruguai). Poster Salud Animal N12. CD-ROM. p.17.

Souza K.C., Andrioli A. & Teixeira M.F.S. 2014. Vírus da artrite encefalite caprina em sêmen: diagnóstico e transmissão. Revista Brasileira de Reprodução Animal. 38(2): 92-97.

Toniolli R., Barros T.B., Toniolli L.C., Guimarães D.B., Freitas E.N. & Nunes T.G.OP. 2016. Diferentes concentrações de gema de ovo em pó adicionada ao diluente ACP-103® na conservação do sêmen de suíno. Ciência Animal Brasileira. 17(2): 243-251.

Viana A.K.S., Chalhoub M., Ribeiro Filho A.L, Almeida A.K., Portela A.P.M., Bittencourt R.F., Alves S.G.G., Bittencourt T.C.C. & Quintela A.T. 2006. Avaliação in vitro do sêmen caprino resfriado, com ou sem centrifugação do plasma seminal e diluído em leite-desnatado-glicose e tris-gema de ovo. Ciência Animal Brasileira. 7: 67-76.

Souza W.L., Moraes E.A., Costa J.M.S., Sousa P.H.F., Lopes Junior E.S., Oliveira R.P. & Toniolli R. 2016. Efeito de diferentes concentrações de melatonina em espermatozoides de carneiros sobre estresse oxidativo após criopreservação. Pesquisa Veterinária Brasileira. 36(7): 657-664.

Published

2017-01-01

How to Cite

Peixoto, R. M., Andrioli, A., Santos, D. O., Pinheiro, R. R., Araújo, J. F., Sousa, A. L. M. de, Silva, D. F., Damasceno, E. M., & Texeira, M. F. da S. (2017). Evaluation of Solvent Toxicity of Plant Extract with Antiviral Action in Refrigerated Goat Semen. Acta Scientiae Veterinariae, 45(1), 8. https://doi.org/10.22456/1679-9216.80578

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